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CT26.wt小鼠結(jié)腸癌細(xì)胞
支原體污染一直是細(xì)胞培養(yǎng)的“頭號(hào)敵人”,但是支原體的存在卻十分普遍,它的“不請(qǐng)自來(lái)”總是讓我們措手不及。世界上有近60%的實(shí)驗(yàn)室正在遭受支原體污染的困擾,今天就讓我們來(lái)好好認(rèn)識(shí)這個(gè)“刺頭”吧!
什么是支原體?
支原體結(jié)構(gòu)簡(jiǎn)單,具有高度多形性、無(wú)細(xì)胞壁、增殖緩慢、可在人工培養(yǎng)基中存活并增殖的特點(diǎn)。除此之外,它的“個(gè)頭”很小,只有0.1-0.3um,可通過(guò)一般的濾菌器。支原體主要以二分裂方式繁殖,亦可以出芽方式繁殖,分枝形成絲狀后斷裂呈球桿狀顆粒。大部分支原體繁殖速度比細(xì)菌慢,適宜生長(zhǎng)溫度為35℃,最適pH值為7.8~8.0。在固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)時(shí),形成典型的“荷包蛋”狀菌落。
支原體是如何欺負(fù)細(xì)胞的?
我們知道一株被支原體污染的細(xì)胞是無(wú)法用來(lái)做實(shí)驗(yàn)得出準(zhǔn)確的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的--一方面是因?yàn)橹гw本身也是一種原核細(xì)胞生物,相當(dāng)于一種交叉污染;另一方面,細(xì)胞感染支原體后,由于支原體大量消耗培養(yǎng)基中的營(yíng)養(yǎng)和細(xì)胞代謝的基礎(chǔ)成分,包括核酸前體、氨基酸、維生素、脂質(zhì)、膽固醇等,導(dǎo)致細(xì)胞增殖緩慢及各種代謝、功能紊亂甚至喪失;除此之外,支原體還會(huì)吸附在細(xì)胞表面,破壞細(xì)胞膜的完整性,更有少數(shù)類型支原體可進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),如發(fā)酵支原體、生殖支原體和肺炎支原體。
如何確診細(xì)胞支原體污染?
支原體污染之所以讓廣大科研人員頭疼,是因?yàn)樗谄胀ü鈱W(xué)顯微鏡下難以被發(fā)現(xiàn),并且細(xì)胞被污染早期不會(huì)表現(xiàn)出明顯的“癥狀”。
一般來(lái)說(shuō),如果培養(yǎng)過(guò)程中細(xì)胞增殖突然變慢,培養(yǎng)基中黑點(diǎn)、碎片明顯增多,培養(yǎng)基PH變化(變黃)周期變短,那么細(xì)胞很可能已經(jīng)感染了支原體。這時(shí)候,就需要使用各種檢測(cè)手段來(lái)確認(rèn)。目前常用的方法有:DNA染色法,支原體培養(yǎng)法,PCR法(包括凝膠電泳和熒光定量),化學(xué)發(fā)光法。前兩種方法結(jié)果可靠,但實(shí)驗(yàn)周期長(zhǎng)。PCR法原理是在支原體16S rRNA基因的保守區(qū)設(shè)計(jì)引物,通過(guò)檢測(cè)支原體DNA來(lái)檢測(cè)細(xì)胞中有無(wú)支原體的污染,得到的廣泛應(yīng)用。
細(xì)胞確診支原體污染后,怎么辦?
如果您的細(xì)胞不幸感染了支原體,好的處理方式是立即丟棄該細(xì)胞,并對(duì)培養(yǎng)箱、超凈臺(tái)等設(shè)施及場(chǎng)所進(jìn)行消毒滅菌。因?yàn)橹гw的傳播非常隱秘,相關(guān)研究表明其甚至能通過(guò)氣溶膠傳播。當(dāng)然,如果您的細(xì)胞非常珍貴或者不能再獲得,可以嘗試使用抑制支原體的藥物進(jìn)行處理,嘗試消除支原體污染。能抑制支原體的藥物有四環(huán)素;大環(huán)內(nèi)酯類藥物,如羅紅霉素、克拉霉素、阿奇霉素等;喹諾酮類藥物,如氧氟沙星、司帕沙星等。
這個(gè)過(guò)程一般周期較長(zhǎng),因?yàn)槭褂盟幬锾幚頃r(shí)需配合多次大比例連續(xù)傳代來(lái)提高成功率。堅(jiān)持,就是勝利!
傳代培養(yǎng)及其操作步驟
原代細(xì)胞培養(yǎng)成功以后,需要進(jìn)行分離培養(yǎng),否則細(xì)胞會(huì)因生存空間不足或密度過(guò)大,營(yíng)養(yǎng)障礙,影響細(xì)胞生長(zhǎng)。細(xì)胞由原培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)分離稀釋后傳到新的培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)的過(guò)程稱之為傳代培養(yǎng)。傳代細(xì)胞允許培養(yǎng)的細(xì)胞擴(kuò)增(形成細(xì)胞株),可以進(jìn)行細(xì)胞克隆,易于保存,但可能喪失一些特殊的細(xì)胞和分化特征。傳代細(xì)胞形成細(xì)胞株的最大利處在于提供了大量持久的實(shí)驗(yàn)材料,便于實(shí)驗(yàn)。
1、操作步驟:
(1)吸掉或倒掉培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)舊培養(yǎng)液。
(2)向瓶?jī)?nèi)加入胰蛋白酶液和EDTA混合液少量。以能覆蓋培養(yǎng)瓶底為宜。
(3)置37℃孵箱或室溫(25℃溫度)下進(jìn)行消化,2~5min后把培養(yǎng)瓶放在倒置顯微鏡下進(jìn)行觀察,當(dāng)發(fā)現(xiàn)胞質(zhì)回縮、細(xì)胞間隙增大后,應(yīng)立即中止消化。
(4)吸出消化液,向瓶?jī)?nèi)加入Hanks液少量,輕輕轉(zhuǎn)動(dòng)培養(yǎng)瓶,把殘留消化液沖掉,然后再加培養(yǎng)液。如果僅使用胰蛋白酶消化,在吸除胰蛋白液后,可直接加入少量含血清的培養(yǎng)液,終止消化。
(5)使用彎頭吸管,吸取瓶?jī)?nèi)培養(yǎng)液,按順序反復(fù)輕輕吹打瓶壁細(xì)胞,使之從瓶壁脫離形成細(xì)胞懸液。吹打時(shí)動(dòng)作要輕柔,以防用力過(guò)猛損傷細(xì)胞。
(6)用計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)后,分別接種于新的培養(yǎng)瓶中,置CO2培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)。
(7)細(xì)胞培養(yǎng)換液時(shí)間應(yīng)根據(jù)細(xì)胞生長(zhǎng)的狀態(tài)和實(shí)驗(yàn)要求來(lái)確定。一般2~3d后應(yīng)換一次生長(zhǎng)液。待細(xì)胞鋪滿器皿底面,即可使用;也可繼續(xù)傳代擴(kuò)大培養(yǎng)或換成維持液。
2、注意事項(xiàng):
(1)掌握好細(xì)胞消化的時(shí)間,消化時(shí)間過(guò)短時(shí),細(xì)胞不宜從瓶壁脫落,過(guò)長(zhǎng)的消化會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞脫落、損傷。
(2)掌握好消化濃度,當(dāng)消化液濃度過(guò)高時(shí),消化時(shí)間應(yīng)縮短,過(guò)低時(shí)細(xì)胞消化時(shí)間相對(duì)延長(zhǎng)。
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